Колекція відділу
НАУКОВІ ПУБЛІКАЦІЇ СПІВРОБІТНИКІВ
Moisieieva N, Gorina O, Moisieiev A, Prokopiuk O. Production and cryopreservation of 3D cultures. CryoLetters. 2025; 46(1): 1–13. doi: 10.54680/fr25110110112 https://www.cryoletters.org/abstracts/volume-46/issue-1/abstracts.php#112
Shcheniavskyi IY, Salnykov DО, Chub OV, Prokopyuk OS. The possibility of using cord blood in the cell therapy of pathologies of the central nervous system. Probl Cryobiol Cryomed 2024; 34(3), 165-185. doi: 10.15407/cryo34.03.165 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1988
Shcheniavskyi II, Akhatova YuS. Dependence of ascorbic acid content in nettle leaf extracts on cryoextraction conditions. Probl Cryobiol Cryomed 2024; 34(1):054–058. doi: 10.15407/cryo34.01.054 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1963/2076
Shchenyavskyi IJ. Prospects for the use of umbilical cord blood in the treatment of diseases of the cardiovascular system. Biotechnologia Acta. 2023;16(4):30-42. doi:10.15407/biotech16.04.031 https://biotechnology.kiev.ua/images/BTA/2023/4_2023/Shchenyavsky4_2023.pdf
Shevchenko M, Mykhalchuk T, Prokopіuk O, Karpenko V, Prokopіuk V. Cryopreserved placental derivatives improve quality of life and behavioral responses in mice with chemotherapy-induced ovarian failure. Probl Cryobiol Cryomed. 2023; 33(4): 274-279. doi: 10.15407/cryo33.04.274 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1920/2031
Moisieieva N, Shchenyavsky I, Akhatova Yu, Gorina O, Semenchenko O. Study of release of biologically active compounds from cord blood under different conditions of low-temperature impact. Probl Cryobiol Cryomed. 2023; 33(4): 250-262. doi: 10.15407/cryo33.04.250 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1917/2028
Moisieieva N, Gorina O, Akhatova Yu. Effect of dalargin on apoptosis of L929 fibroblasts during cold stress. CryoLetters. 2023; 44(6), 352-359. doi: 10.54680/fr23610110212 https://www.cryoletters.org/abstracts/volume-44/issue-6/abstracts.php#212
Алабедалькарім НМ, Берест ВП, Моісєєва НМ, Божок ГА, Бондаренко ТП. Антимікробний пептид граміцидин S впливає на проліферацію та пригнічує адгезію фібробластів лінії L929. Біофізичний вісник. 2023; 49: 43-60. doi: 10.26565/2075-3810-2023-49-04 https://periodicals.karazin.ua/biophysvisnyk/article/view/22104
Shevchenko N, Terekhova O, Kaverinska A, Prokopiuk O, Lazurenko V, Prokopіuk V. Evaluation of effectiveness of umbilical cord cryoextract in aesthetic medicine (in vitro study). Probl Cryobiol Cryomed. 2023; 33(2): 133–138. doi: 10.15407/cryo33.02.133 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1891
Safonov R, Prokopiuk V, Hryshchenko O, Prokopiuk O, Lazurenko V, Hryshchenko M, Parashchuk V. Immunohistochemical age changes of vagina tissues in women with pelvic prolaps. Reproductive Endocrinology. 2023; 68: 84-88. doi: 10.18370/2309-4117.2023.68.84-88 https://reproduct-endo.com/article/view/284162
Miasnikova DYu, Pinchukova NA, Vlasenko HS, Zinchenko IO, Zbruyev OI, Evtushenko YeV, Gurina TM, Prokopyuk OS, Chebanov VA. The methodology for determination of 1-methylcyclopropene in gas-air mixture after release from supramolecular complex. Functional Materials. 2023; 30(1): 128-133. doi: 10.15407/fm30.01.128 http://functmaterials.org.ua/contents/30-1/128
Prokopіuk V, Shevchenko M, Kaverinska A, Mykhalchuk T, Prokopіuk O. Cryopreserved placental derivatives increase survival of mice with cyclophosphamide-induced ovarian failure. Probl Cryobiol Cryomed. 2023; 33(1): 059–063. doi: 10.15407/cryo33.01.059 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1869
Гулевський ОК, Рєпiн МВ, Щенявський IЙ. Порушення бар’єрних властивостей мембран еритроцитiв при впливi низьких температур як результат дезорганiзацiї надмолекулярної структури гемоглобiну. Доповіді НАН України. 2015; 6: 130-138. doi: 10.15407/dopovidi2015.06.130 https://www.dopovidi-nanu.org.ua/uk/archive/2015/6/17
Shcheniavskyi ІJ. Cardioprotective effect of enkephalins under immobilization stress. Biotechnologia Acta. 2022; 15(1): 52-60. doi: 10.15407/biotech15.01.052 https://biotechnology.kiev.ua/images/BTA/2022/1_2022/shchenyavsky_1_2022.pdf
Sukach OM, Vsevolodska SO, Ochenashko OV, Shevchenko MV. Obtaining and characterization of rat fetuses neural cells aggregates/spheroids Biopolymers and Cell. 2022; 38 (2): 93–102. doi: 10.7124/bc.000A77 https://biopolymers.org.ua/content/38/2/093/
Тертишник ДЮ, Прокопюк ОС, Прокопюк ВЮ, Лазуренко ВВ, Борзенокова ІВ, Черняк ОЛ. Морфологічна особливості плаценти від вагітних з плацентарною дисфункцією, обумовленою цукровим діабетом. Український журнал медицини, біології та спорту. 2022; 7(1): 79–85. doi: 10.26693/jmbs07.01.079 https://repo.knmu.edu.ua/items/9321a3e1-c550-46b3-b37b-b1ebbb091ef9
Shcheniavsky I, Kovalenko I, Gulevsky O. Cardioprotective effect of low molecular weight (below 5 kDa) fraction of cattle cord blood cryohemolysate. Probl Cryobiol Cryomed. 2022; 32(3): 206–213. doi: 10.15407/cryo32.03.206 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1806
Moisieieva N, Gulevskyy O, Gorina O. Effect of leu-enkephalin (dalargin) on apoptosis and necrosis of leukocytes after cold stress. Probl Cryobiol Cryomed. 2022; 32(1): 14–23. doi: 10.15407/cryo32.01.014 https://journal.cryo.org.ua/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1775
Gulevskyy OK, Moisieieva NM, Sidorenko OS, Gorina OL. Preincubation of L929 line fibroblasts with synthetic leu-enkephalin Tyr-D-Ala-Gly-Phe-Leu-Arg preserves their proliferative potential under cold stress. Cytology and Genetics. 2022; 56(4): 343–350. doi: 10.3103/S0095452722040053 https://cytgen.com/en/2022/39-47N4V56.htm
Shevchenko N, Mozgovska A, Bobrova O, Bashtan N, Kovalenko G, Ivchenko T. Post-thaw survival of meristems from in vitro sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) plants. Biology and life sciences forum. 2021; 4(1): 43-50. doi: 10.3390/IECPS2020-08769 https://www.mdpi.com/2673-9976/4/1/43
Чернобай НА, Возовик КД, Каднікова НГ. Порівняльний аналіз методів оцінки збереженості культур мікроводоростей Dunaliella salina Teodoresco та Chlorococcum dissectum Korshikov (Chlorophyta) після впливу стрес-факторів. Аlgologia. 2021. 31(4): 353–364. doi: 10.15407/alg31.04.353 https://algologia.co.ua/journal/article/view/31.4.353
Ivchenko T, Shevchenko N, Lialiuk O, Stribul T. Influence of seed priming techniques on seedling establishment and yield of Asparagus hybrids. Biology and life sciences forum. 2021; 4(1): 31-38. doi: 10.3390/IECPS2020-08734 https://www.mdpi.com/2673-9976/4/1/31
Gulevskyy AK, Akhatova YuS. Chorionic gonadotropine: structural heterogeneity, metabolic pathway, functions, obtaining and possibilities of clinical application. Biotechnologia Acta. 2021; 14(3): 5-21. doi: 10.15407/biotech14.03.005 https://biotechnology.kiev.ua/images/BTA/2021/3_2021/gulevskyy_3_2021.pdf
Гулевський ОК, Моісєєва НМ, Горіна ОЛ. Нейропептид кіоторфін запобігає розвитку апоптозу фібробластів лінії L929 в умовах холодового стресу. Доповіді НАН України. 2021; 4: 103–109. doi: 10.15407/dopovidi2021.04.103 http://dspace.nbuv.gov.ua/handle/123456789/180576
Gulevsky O, Moisieieva N, Gorina O, Akhatova Y. Comparative evaluation of wound healing effect of cord blood low molecular weight fraction (below 5 kDa) and Actovegin drug in skin cryolesions. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2021; 31 (2): 116–126. doi: 10.15407/cryo31.02.116 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1726
Shevchenko N, Kovalenko G, Kovalenko I, Stribul T. Discovery of osmotic responses of sweet potato meristems in cryoprotective solutions. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2021, 31(2), 180-184. doi: 10.15407/cryo31.02.180 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1732
Щенявський ІЙ. Удосконалення моделі інфаркту міокарда у щурів. Експериментальна та клінічна фізіологія і біохімія. 2021; 1(92): 40–47. doi: 10.25040/ecpb2021.01-02.040 http://ecpb.org.ua/archive/92/1/40
Gulevskyy AK, Akhatova YuS. Current concept of the structural and functional properties of alfa-fetoprotein and the possibilities of its clinical application. Biotechnologia Acta. 2021; 14(1): 25-37. doi: 10.15407/biotech14.01.025 https://biotechnology.kiev.ua/images/BTA/2021/1_2021/gulevskyy_1_2021.pdf
Shcheniavsky I. Anti-apoptotic effect of synthetic leu-enkephalin Dalargin on rat leukocytes in cold stress model in vivo. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2021; 31 (1): 3–13. doi: 10.15407/cryo31.01.003 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1709
Prystalov A, Bobrova O, Kuleshova L. Application of vacuum infiltration in cryopreservation of isolated grape buds. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2021, 31(1): 51-57. doi: 10.15407/cryo31.01.051 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1713
Гулевський ОК, Ахатова ЮС, Жаркова ЄЄ. Посилення кисневотранспортної функції еритроцитів після гіпотермічного зберігання під дією низькомолекулярної фракції кордової крові людини і препарату Актовегін. Доповіді НАН України. 2020; 11: 85-91. doi: 10.15407/dopovidi2020.11.085 https://www.dopovidi-nanu.org.ua/en/archive/2020/11/11
Присталов АІ, Кулєшова ЛГ, Боброва ОМ, Зеленянська НМ. Ефективність метода вакуум-інфільтрації для насичення різними розчинами рослинних об’єктів трубчасто-капілярної структури. Вісник проблем біології і медицини. 2020; 158 (4): 65-69. doi: 10.29254/2077-4214-2020-4-158-65-69 https://vpbm.com.ua/ua/vyipusk-4-(158)-2020/14334
Vozovyk K, Bobrova O, Prystalov A, Shevchenko N, Kuleshova L. Amorphous state stability of plant vitrification solutions. Biologija. 2020; 66(1): 47–53. doi: 10.6001/biologija.v66i1.4190 https://www.lmaleidykla.lt/ojs/index.php/biologija/article/view/4190
Ali S, Moiseieva N, Bozhok G. Cryopreservation of cell culture derived from dorsal root ganglia of neonatal pigs. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020; 30 (2): 158–168. doi: 10.15407/cryo30.02.158 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1623
Buriak I, Fleck RA, Goltsev A, Shevchenko N, Petrushko M, Yurchuk T, Puhovkin A, Rozanova S, Guibert EE, Robert MC, Paz LJ, Powell-Palm MJ, Fuller B. Translation of cryobiological techniques to socially economically deprived populations—Part 1: Cryogenic preservation strategies. Journal of Medical Devices. 2020; 14(1): 010801. doi: 10.1115/1.4045878 https://asmedigitalcollection.asme.org/medicaldevices/article-abstract/14/1/010801/1072355/Translation-of-Cryobiological-Techniques-to?redirectedFrom=fulltext
Gulevsky AK, Shcheniavsky II. Collagen: structure, metabolism, production and industrial application. Biotechnologia acta. 2020; 13 (5): 42-61. doi: 10.15407/biotech13.05.042 https://biotechnology.kiev.ua/images/BTA/2020/5_2020/gulevsky_5_2020.pdf
Gulevskyy OK. Influence of cryoprotective agents on protein biosynthesis in Krebs-2 ascites carcinoma and wheat germ cell-free systems. Cryobiology. 2020; 96: 55-60. doi: 10.1016/j.cryobiol.2020.08.005 https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S001122402030047X?via%3Dihub
Gulevskyy AK, Akhatova YuS., Nikolchenko AYu. Cryoprotective agents affect amino acids incorporation into total proteins in cells of lymphoid organs and liver of experimental animals. Ukr Biochem J, 92 (5), 2020, 41-49. doi: 10.15407/ubj92.05.041 http://ukrbiochemjournal.org/wp-content/uploads/2020/11/Gulevsky_5_20.pdf
Gulevsky O, Moiseyeva N, Gorina O, Nikolchenko A, Schenyavsky I. Comparative evaluation of biological activity of fraction below 5 kDa from cattle cord blood after low-temperature storage (at –80°C) or lyophilization to treat burn wounds in rats. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020; 30 (1): 47-57. doi: 10.15407/cryo30.01.047 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1601
Моісєєв АІ, Божок ГА, Горіна ОЛ. Порівняльна характеристика тривимірного та моношарового культивування перещеплюваної лінії фібробластів L 929. Доповіді НАН України.2019; 8: 93-101. doi: 10.15407/dopovidi2019.08.093 https://www.dopovidi-nanu.org.ua/sites/default/files/2019/8/2019-08-12.pdf
Chernobay N, Kadnikova N, Kovalenko I. The role of cold adaptation in cryopreservation of Dunaliella salina Teod microalgae. Advances in Biology & Earth Sciences. 2019; 4(2): 119-127. http://jomardpublishing.com/UploadFiles/Files/journals/ABES/V4N2/Chernobai%20et%20al.pdf
Гулевський О.К., Жаркова Є.Є. Вплив низькомолекулярної фракції (до 10 кДа) кордової крові людини на структурно-функціональні властивості еритроцитів після гіпотермічного зберігання. Доповіді НАН України. 2019; 3: 84-88. doi: 10.15407/dopovidi2019.03.084 https://www.dopovidi-nanu.org.ua/sites/default/files/2019/3/19-03-12.pdf
Гулевський ОК, Моісєєва НМ, Горіна ОЛ. Антиапоптотична дія нейропептиду лей-енкефаліну щодо лейкоцитів донорської крові, підданих холодовому стресу. Доповіді НАН України. 2019; 4: 94-100. doi: 10.15407/dopovidi2019.04.094 https://www.dopovidi-nanu.org.ua/sites/default/files/2019/4/19-04-13.pdf
Gulevsky OK, Shchenyavsky II. Study of protective effect of synthetic neuropeptide Dalargin under cold stress. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2019; 29 (3): 246–254. doi: 10.15407/cryo29.03.246 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1547/1652
Божок ГА, Моісєєв АІ, Горіна ОЛ, Бондаренко ТП. Морфофункціональні особливості фібробластів лінії L929 в умовах 3D-культивування. Фізіологічний журнал. 2019; 65 (3): 34-40. doi: 10.15407/fz65.03.034 https://fz.kiev.ua/index.php?abs=1660
Узленкова НЄ, Скоробогатова НГ, Моісєєва НМ, Масленнікова ОЛ. Особливості клітинного складу кісткового мозку щурів при гострому опроміненні та введенні S-гетерилмодифікованого цистеаміну. Фізіологічний журнал. 2018; 64 (3): 64-68. doi: 10.15407/fz64.03.061 https://fz.kiev.ua/index.php?abs=1571
Medvedev D, Bisko N, Kadnikova N. Influence of pH values of a nutrient medium on growth and morphological properties of strains Cladobotryum sp. Ukrainian Journal of Ecology. 2018; 8 (4): 79-84. https://www.ujecology.com/abstract/influence-of–values-of-a-nutrient-medium-on-growth-and-morphological-properties-of-strains-cladobotryum-sp-5511.html
Gulevskyy AK, Lavrik AA, Trifonova AV, Karpenko VG. Influence of low-molecular fraction (up to 5 kDa) of human cord blood on growth properties of culture of mesenchymal stromal cells subjected to cryopreservation. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2018; 28 (2): 131-138. doi: 10.15407/cryo28.02.131 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1431
Goltsev AN, Falko OV, Volina VV, Lipina OV, Prokopyuk OS, Gulevsky OK. Morphological study of liver in rats with toxic hepatitis after application of cryopreserved human cord blood serum. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2018; 28 (1): 14–18. doi: 10.15407/cryo28.01.014 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1377
Prokopyuk VY, Grischenko OV, Prokopyuk OV, Shevchenko NO, Falko OV, Storchak AV, Schedrov AO. Effect of Cryopreserved Placental Explants on Female Reproductive System Under Normal and Pathological Conditions (Experimental study). Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2017; 27(3), 250–265. doi: 10.15407/cryo27.03.250 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1341
Гулевський ОК, Абакумова ОС, Щенявський ІЙ. Біологічна активність низькомолекулярної фракції, отриманої з кордової та периферичної крові корів різного віку. Фізіологічний журнал. 2017; 63 (2): 73-79. doi: 10.15407/fz63.02.073 https://fz.kiev.ua/index.php?abs=1373
Гулевський ОК, Моісєєва НМ, Горіна ОЛ, Нікольченко АЮ, Щенявський ІЙ. Вплив низькомолекулярної фракції (до 5 кДа) з крові телят і з плаценти корів у складі кремів на процес загоєння опікових ран у щурів. Експериментальна та клінічна фізіологія і біохімія. 2017; 3: 32-39. doi: 10.25040/ecpb2017.03.032 http://ecpb.org.ua/pdf/79/3/79.03.032.pdf
Gulevskyy AK, Moisieieva NN, Gorina OL, Seidaliieva ZA. Effect of Oftocord gel vs Actovegin on regenerative processes following mechanical trauma to the rabbit cornea. J.ophthalmol. 2017; 4: 44-50. doi: 10.31288/oftalmolzh201744450 https://www.ozhurnal.com/en/archive/2017/4/8-fulltext
Ivchenko TV, Vitsenya TI, Shevchenko NA, Bashtan NO, Kornienko SI. Hypothermic and low-temperature storage of garlic (Allium sativum L.) for in vitro collections. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2017; 27 (2): 110-120. doi: 10.15407/cryo27.02.110 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1291
Gulevsky OK, Akhatova YS, Shchenyavsky II. Features of apoptosis, induced by temperature reduction. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2017; 27 (2): 97–109. doi: 10.15407/cryo27.02.097 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1290
Prokopyuk VY, Chub OV, Shevchenko NA, Falko OV, Musatova IB, Lazurenko VV, Tischenko AN, Prokopyuk OS. Cryopreserved Placental Explants Increase Lifespan of Male Mice and Change Survival Features of Female Mice. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2017; 27(2), 143–150. doi: 10.15407/cryo27.02.143 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1294
Gulevsky OK, Schenyavsky II. Antihypoxant activity of low molecular weight fraction bovine blood cryohemolysate at different stages of ontogenesis. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2017; 27 (1): 41–50. doi: 10.15407/cryo27.01.041 https://journal.cryo.org.ua/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1277
Гулевський ОК, Абакумова ОС, Моісєєва НМ, Горіна ОЛ. Вплив низькомолекулярної (до 5 кДа) фракції з сердець новонароджених поросят на біохімічні показники сироватки крові щурів після інфаркту міокарда. Доповіді НАН України. 2016; 8: 116-124. doi: 10.15407/dopovidi2016.08.116 https://www.dopovidi-nanu.org.ua/sites/default/files/2016/N8/16-08-16.pdf
Tretyak DV, Gulevsky OK. Features of protein-peptide and carbohydrate composition of supernatants from Tenebrio molitor larvae after cold acclimation. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2016; 26 (4): 322-330. doi: 10.15407/cryo26.04.322 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/1241
Гулевський ОК, Грищенкова ОО, Реліна ЛІ, Третяк ДВ. Порівняльний аналіз преципітованих ПЕГ-3000 білків із аклімованих та неаклімованих личинок Tenebrio molitor. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2015; 25 (1): 76-80. doi: 10.15407/cryo25.01.076 https://cryo.org.ua/journal/index.php/probl-cryobiol-cryomed/article/view/759
ГЛАВИ МОНОГРАФІЇ
Гулевський ОК, Моісєєва НМ, Горіна ОЛ, Ахатова ЮС, Щенявський ІЙ. Протекторна дія нейропептидів на біологічні об’єкти в умовах холодового стресу. «Холод у біології та медицині: сучасний стан і перспективи» до ювілею Інституту проблем кріобіології і кріомедицини НАН України за редакцією доктора біологічних наук, професора ОЮ Петренка, Київ, «Наукова думка» НАН України. 2024; С. 177-185. ISBN: 978-966-00-1867-9. doi: 10.15407/978-966-00-1867-9 https://books-nasu.org.ua/cold-in-biology-and-medicine-state-of-the-art-and-perspectives/
Прокопюк ОС, Прокопюк ВЮ, Шевченко МВ, Мусатова ІБ, Бабійчук ЛВ. Сучасні біотехнології кріоконсервування плацентарних біопрепаратів і перспективи їх клінічного застосування в геріатрії. «Холод у біології та медицині: сучасний стан і перспективи» до ювілею Інституту проблем кріобіології і кріомедицини НАН України за редакцією доктора біологічних наук, професора ОЮ Петренка, Київ, «Наукова думка» НАН України. 2024; С. 227-235. ISBN: 978-966-00-1867-9. doi: 10.15407/978-966-00-1867-9 https://books-nasu.org.ua/cold-in-biology-and-medicine-state-of-the-art-and-perspectives/
Moisieieva N, Moisieiev A, Gorina O, Akhatova Y. Expediency of using a physical and mathematical model in cell engineering. IFMBE Proceedings. 2023; v.89, 87–93. doi: 10.1007/978-3-031-37132-5_12 https://link.springer.com/chapter/10.1007/978-3-031-37132-5_12
